آمار
| تعداد نشریات | 26 |
| تعداد شماره‌ها | 447 |
| تعداد مقالات | 4,557 |
| تعداد مشاهده مقاله | 5,380,003 |
| تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 3,580,072 |
اثر تنظیم کننده‌های رشد گیاهی بر کالوس‌زایی و باززایی گیاه دارویی زوفا (Hyssopus officinalis) در شرایط درون شیشهای | ||
| مجله بیوتکنولوژی کشاورزی | ||
| دوره 13، شماره 3، مهر 1400، صفحه 187-204 اصل مقاله (828.45 K) | ||
| نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
| شناسه دیجیتال (DOI): 10.22103/jab.2021.16756.1277 | ||
| نویسندگان | ||
| صبا مروتی1؛ علیرضا زبرجدی* 2؛ صحبت بهرامی‌نژاد3؛ عبداله نجفی4 | ||
| 1دانشجوی کارشناسی ارشد بیوتکنولوژی کشاورزی، گروه مهندسی تولید و ژنتیک گیاهی، دانشکده علوم و مهندسی کشاورزی، دانشگاه رازی، کرمانشاه، ایران | ||
| 2استادیار گروه زراعت و اصلاح نباتات دانشکده کاورزی دانشگاه رازی کرمانشاه-استادیار گروه پژوهشی بیوتکنولوژی مقاومت به خشکی دانشگاه | ||
| 3دانشیار گروه مهندسی تولید و ژنتیک گیاهی، دانشکده علوم و مهندسی کشاورزی، دانشگاه رازی، کرمانشاه، ایران. | ||
| 4گروه مهندسی تولید و ژنتیک گیاهی، دانشکده علوم و مهندسی کشاورزی، دانشگاه رازی، کرمانشاه، ایران، | ||
| چکیده | ||
| هدف: زوفا (Hyssopus officinalis)، از مهم‌ترین گیاهان دارویی و ادویه‌ای متعلق به تیره نعناعیان و غنی از اسانس‌های روغنی است که برای اهداف دارویی، بهداشتی و خوراکی مورد استفاده قرار می‌گیرد. با استفاده از روش‌کشت بافت از جمله تولید کالوس و باززایی این گیاه دارویی مهم می‌توان راندمان تولید متابولیت‌های ثانویه موثر آن را از نظر کمی و کیفی ارتقاء بخشید. مطالعه حاضر در محیط کشت پایه MS، به منظور تعیین مناسب‌ترین غلظت تنظیم‌کننده‌‌‌های رشد اکسینی و سیتوکینینی برای بدست آوردن بیشترین بازده در القاء و تولید کالوس و همچنین باززایی گیاهچه‌های درون شیشهای از ریز‌نمونه‌های برگ و هیپوکوتیل در گیاه زوفا انجام گرفت. مواد و روش‌ها: آزمایش کالوس‌دهی به صورت فاکتوریل در قالب طرح کاملاً تصادفی (CRD) با سه تکرار اجرا گردید. در این آزمایش از سطوح مختلف تنظیم کننده رشد گیاهی (صفر، 5/0، 1 و 2 میلی‌گرم در لیتر NAA) و دو نوع ریزنمونه برگ و هیپوکوتیل استفاده گردید. صفات مختلف از جمله سرعت رشد نسبی، وزن خشک و تر، قطر، رنگ و ساختار فیزیکی و درصد القای کالوس اندازه‌گیری و بررسی شد. آزمایش باززایی مستقیم و غیر مستقیم نیز به صورت فاکتوریل بر پایه طرح کاملا تصادفی با سه تکرار صورت گرفت. از سطوح مختلف تنظیم کننده رشد (1 و 2 میلی‌گرم در لیتر NAA) و (2 و 4 میلی‌گرم در لیتر BAP) استفاده شد و صفت درصد باززایی اندازه‌گیری شد. نتایج: بهترین درصد القای کالوس (100%) در محیط MS همراه با 2 میلی گرم در لیتر NAA و در ریزنمونه هیپوکوتیل بدست آمد. بیشترین درصد باززایی مستقیم (73%) و غیر مستقیم (80%) در محیط MS و ترکیب هورمونی 2 میلی گرم در لیتر NAA و 4 میلی گرم در لیتر BAP در ریزنمونه هیپوکوتیل و کالوس حاصل از هیپوکوتیل مشاهده گردید. نتیجه‌گیری: این آزمایش مشخص نمود که ریزنمونه هیپوکتیل مناسب جهت کالوس زایی و باززایی در زوفا می‌باشد. | ||
| کلیدواژه‌ها | ||
| کالوس؛ زوفا؛ تنظیم کننده رشد گیاهی؛ محیط کشت MS | ||
| مراجع | ||
|
ابراهیمی منصور (1375) رویانزایی در گیاه نعناع و تعیین مقدار منتول در نمونههای کشت آزمایشگاهی. پایان نامه کارشناسی ارشد دانشگاه تربیت معلم.
بهمنی هلیا، معروفی اسعد، فاخری براتعلی، مجدی محمد (1395) بررسی تولید کالوس و باززایی غیر مستقیم گیاه دارویی مرزه سهندی (Satureja sahendica Bornm). بیست و چهارمین کنگره بین المللی و کنگره ملی ژنتیک ایران. 5-1.
زبرجدی علیرضا، کهریزی دانیال، ملصقی مژگان (1391) بررسی کالزایی و باززایی در گیاه دارویی زوفا (Hyssopus officinalis L.). گزارش نهایی طرح پژوهشی. دانشگاه رازی.
سهیلی شهاب، میری سید مهدی، قاضیجهانی نوشین (1400). القاء کالوس از کشتهای درون شیشهای برگ، هیپوکتیل و ریشه زوفا (Hyssopus officinalis). اولین همایش ملی کاربرد پژوهشهای نوین شیمی و کشاورزی در توسعه گیاهان دارویی. نهاوند. ایران. 4-1.
قلیزاده جعفر (1388) بررسی اثرات تیمارهای هورمونی در رشد و تکوین قطعات جداکشت برگ و ریشه اسپند (Peganum harmala). پایاننامه کارشناسی ارشد علوم گیاهی گرایش سلولی-تکوینی. دانشگاه تبریز.
References
Abe T, Kudo M, Oka Y, et al. (1996) Changes in α-amylase activity during plant regeneration from rice calli. J Plant Physiol 146, 592-598.
Alizadeh M, Hosseini B (2013) Study of the effect of population and BAP hormonal treatments on in vitro regeneration of medicinal plant (Hyssopus officinalis). J Horticul Sci 27 (2), 201-207.
Babich O, Sukhikh S, Pungin A, et al. (2021) Evaluation of the conditions for the cultivation of callus cultures of Hyssopus officinalis regarding the yield of polyphenolic compounds. Planta 10(915): 1-10.
Bahmani H, Maroufi A, Fakherei B, Majdi M (2016) Study of callogenesis and Indirect regeneration in Sahandi Savory (Satureja sahendica Bornm). 24th Int Iran Genet Cong 1-5 (In Persian).
Bayliss M (1985) Control of cell division in cultured cells. In: Bryant JA and Francis D (eds). The cell division cycle in plants. Cambridge: Cambridge University Press 157-178.
Bernath J (1993) Cultivation Medicinal Plant. Mezo. Publication. Budapest 566p.
Del-Poza J C, Lopez-Matas M A, Ramirez-Parra E, Gutierrez C (2005) Hormonal control of the plant cell cycle. Physiol Plantarum 123, 173-183.
Dzhumaevkh K (1986) Dynamic of essential oil accumulation in Hyssopus seravschanicus. Pro Nat Acad Sci 6, 31-33.
Ebrahimi M (1996) Embryogenesis in peppermint plant and determine the amount of menthol in laboratory cultures. M.Sc. thesis. Tarbiat Moallem University (In Persian).
George E. F, Deburgh P. C (2008) Micropropagation: Uses and methods. Plant Propagation by Tissue Culture 1, 29-64.
Gholizadeh J (2009) Study of the effects of hormonal treatments on the growth and development of root and leaf explants of Pegaum harmala. Cellular and Developmental M.Sc. Thesis. Tabriz University (In Persian).
Lisowska K, Wysokinska H (2000) In vitro propagation of Catalpa ovate G. Don. Plant Cell Tissue Organ Culture 60, 171-176.
Mendoza M G, Kaeppler H F (2002) Auxin and sugar effects on callus induction and plant regeneration Frequencies from mature embryos of wheat (Triticum aestivum L.). In vitro cell Develop Biol Plant 38, 39-45.
Nanova Zh, Slavova Y, Nenkova D, Ivanova I (2007) Microclonal Propagation of Hyssop (Hyssopus officinalis L.). Bulgar J Agric Sci 13, 213-219.
Praveena R, Amarnath-Pandian S, Jegadeesan M (2012) In vitro culture studies on medicinal herb - Coleus forskohlii Briq. Libyan Agric Res Center J 3(1), 30-35.
Preece JY (1995) Can nutrient salts partially substitute for plant growth regulator? Plant Tissue Culture Biotechnol 1, 26-37.
Roberson D, Cristiane L, Francine L, et al. (2005) Plant regeneration from cotyledonary explants of Eucalyptus camaldulensis. Sci Agric 62, 406-412.
Soheili Sh, Miri SM, Ghazijahani N (2021) Callus induction from In vitro cultured leaf, hypocotyl and root of Hyssopus officinalis. The First national conference on the applications of advanced chemical and agricultural research for development of medicinal plants. 1-4. Nahavand, Iran (In Persian).
Stang C, Prehn D, Gebauer M (1999) Optimization of in vitro culture conditions for Pinus radiat embryos and histological characterization of regeneration shoots. Biol Res 32, 19-28.
Tayefeh S, Mahna N, Kazemitabar S. K, Ghasemi-Omran V (2018) Callogenesis induction in two Hyssopus species (H. officinalis and H. angustifolius) using different hormonal levels and culture media. J Medic Plant Biotechnol 3(2), 29-39.
Van Ech J M, Kitt S L (1992) Regeneration of peppermint and orange mint from leaf disks. Plant Cell Tissue Organ Culture 30, 41-49.
Wang T L, Everett N P, Gould A R, Street H P (1981) Study on the control of the cell cycle in cultured plant cells. The effects of cytokinin. Protoplasma 106, 23-35.
Zebarjadi A, Kahrizi D, Molsaghi M (2012) Study of callus induction and regeneration of medicinal plant (Hyssopus officinalis L.). The final report of the research project. Razi university (In Persian).
Zhang Y, Gao Y, Wang W, Yao L (2008) Callus Induction and Plantlet Regeneration of Lavandula angustifolia ‘Munstead’. J Shanghai Jiaotong Univy (Agric Sci). | ||
|
آمار تعداد مشاهده مقاله: 655 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 378 |
||