آمار
| تعداد نشریات | 26 |
| تعداد شماره‌ها | 447 |
| تعداد مقالات | 4,557 |
| تعداد مشاهده مقاله | 5,379,997 |
| تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 3,580,061 |
مهندسی ژنتیک برنج با انتقال ژن‌های Deeper Rooting1 و Phosphorus-Starvation Tolerance1 | ||
| مجله بیوتکنولوژی کشاورزی | ||
| دوره 14، شماره 1، اردیبهشت 1401، صفحه 1-20 اصل مقاله (891.9 K) | ||
| شناسه دیجیتال (DOI): 10.22103/jab.2021.17991.1331 | ||
| نویسندگان | ||
| مهربانو کاظمی الموتی1؛ زهرا قربانزاده2؛ لیلا پورهنگ3؛ سید محمد موسوی پاکزاد4؛ الهه معتمد1؛ مونا ماپار5؛ علی اکبر عبادی6؛ محمد رضا غفاری7؛ قاسم حسینی سالکده8؛ بهزاد قره یاضی* 9؛ مطهره محسن پور* 10 | ||
| 1دانش آموخته کارشناسی ارشد، کارشناس پژوهشگاه پژوهشگاه بیوتکنولوژی کشاورزی (ABRII)، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، کرج، ایران | ||
| 2دانشجوی دکتری، همکار طرح، پژوهشگاه پژوهشگاه بیوتکنولوژی کشاورزی (ABRII)، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، کرج، ایران | ||
| 3دانش آموخته کارشناسی ارشد، کارشناس پژوهشگاه پژوهشگاه بیوتکنولوژی کشاورزی (ABRII)، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، کرج، ایران. | ||
| 4دانش آموخته کارشناسی، کارشناس پژوهشگاه پژوهشگاه بیوتکنولوژی کشاورزی (ABRII)، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، کرج، ایران. | ||
| 5پژوهشگر پسادکتری، پژوهشگاه بیوتکنولوژی کشاورزی (ABRII)، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، کرج، ایران. | ||
| 6استادیار، موسسه تحقیقات برنج کشور (RRII)، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، رشت، ایران | ||
| 7پژوهشگاه بیوتکنولوژی کشاورزی کرج | ||
| 8پژوهشکده بیوتکنولوژی کرج | ||
| 9پژوهشکده بیوتکنولوژی | ||
| 10پژوهشگاه بیوتکنولوژی کشاورزی (ABRII)، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، کرج، ایران | ||
| چکیده | ||
| هدف: اصلاح ساختار ریشه با جذب کارآمد آب و استفاده موثر از مواد مغذی مرتبط است و استقرار بهتر گیاه در خاک را فراهم می‌کند. مهندسی ژنتیک برای بهبود ساختار ریشه می‌تواند منجر به حفظ عملکرد بالاتر در شرایط خشکی شود. این پژوهش با هدف اصلاح ساختار ریشه برنج به منظور تحمل به خشکی و بهبود کارایی جذب عناصر غذایی انجام گرفت. برای این منظور انتقال همزمان ژن‌های Deeper Rooting1 یا DRO1 که در تنظیم زاویه رشد ریشه‌ها برای انطباق با شرایط خشکی نقش دارد و Phosphorus-Starvation Tolerance1 یا PSTOL1 که در افزایش جذب فسفر و بهبود ساختار ریشه موثر است، به گیاه برنج طراحی و اجرا شد. مواد و روش‌ها: ژن‌های DRO1 و PSTOL1 برگرفته از ارقام وحشی برنج طی مراحلی به‌ترتیب تحت پیشبرنده مختص ریشه و پیشبرنده دائمی همسانه‌سازی و در ناحیه T-DNA حامل دوگانه اگروباکتریومی قرار داده شدند. سازه حاصل موسوم به pUhrDroPstol به اگروباکتریوم سویه EHA105 منتقل و برای انتقال ژن به برنج رقم هاشمی مورد استفاده قرار گرفت. پس از انجام مراحل انتقال ژن، گیاهان باززاشده حاصل در محیط انتخابی حاوی 50 میلی‌گرم بر لیتر هیگرومایسین در مراحل مختلف کالوس‌زایی، باززایی و ریشه‌زایی زنده مانده و رشد کرده و به محلول یوشیدا و سپس به گلدان منتقل شدند. گیاهان تراریخته احتمالی توسط واکنش زنجیره‌ای پلیمراز (PCR) مختص سازه و مختص ژن مورد تایید قرار گرفتند و رخدادهای مستقل مشخص شدند. نتایج: در این پژوهش 12 رخداد احتمالی برنج تراریخته حاصل شد که 10 رخداد در آنالیز PCR حضور هر دو ژن OsDRO1 و OsPSTOL1 را نشان دادند. مقایسه فنوتیپ ریشه با گیاه شاهد تفاوت ظاهری در ساختار ریشه نشان داد. گیاهان تراریخته حاصل در گلخانه تراریخته پژوهشگاه بیوتکنولوژی کشاورزی بذرگیری شدند و خلوص آنها با آنالیز مولکولی در نسل‌های T1 و T2 مشخص شد. نتیجه‌گیری: در این تحقیق دو ژن کاندید موثر در تغییر ساختار ریشه و تحمل به خشکی با استفاده از مهندسی ژنتیک به برنج رقم هاشمی منتقل شد. تاکنون انتقال همزمان این دو ژن کاندید گزارش نشده است. گیاهان تراریخته حاصل سیستم ریشه‌‌ای بهتری را نسبت به گیاه شاهد نشان می‌دهند. سازه چند ژنی حاصل را می‌توان با هدف تغییر ساختار ریشه و تحمل به خشکی و بهبود کارایی جذب فسفر برای انتقال ژن به سایر گیاهان نیز مورد استفاده قرار داد. امید است تولید برنج تراریخته با بهبود کارایی استفاده از عناصر غذایی و با تغییر ساختار ریشه بتواند تحمل به خشکی و عملکرد را در این محصول مهم زراعی افزایش و سبب کاهش مصرف آب در کشت برنج شود. | ||
| کلیدواژه‌ها | ||
| انتقال ژن با سازه چند ژنی؛ برنج تراریخته؛ ژن Deeper Rooting1؛ ژن Phosphorus-Starvation Tolerance1 | ||
| مراجع | ||
|
چمنی محصص فاطمه، سلوکی محمود، قره یاضی بهزاد، فرشاد فاطمه، فهمیده لیلا، غفاری اکرم، محسن پور مطهره (1396) جداسازی و آنالیز عملکرد ژن افزایش جذب فسفر (PSTOL1) از گونه وحشی برنج. مجله علمی پژوهشی مهندسی ژنتیک و ایمنی زیستی. 6 (1) 1-10.
رئوفی البرز، توحیدفر مسعود، سلوکی، محمود، محسن پور مطهره (1390) جداسازی و کلون کردن دو ژن از خانواده PR1 و ساخت پلاسمیدهای سه‌گانه حاوی سه گروه مختلف از ژن‌های PR ، به منظور تولید گیاهان تراریخته مقاوم به بیماری‌های قارچی. مجله بیوتکنولوژی کشاورزی. 3 (2) 27-46.
زندی میلاد، حسینی رامین، محسن پور مطهره، حسینی سالکده قاسم، قره یاضی بهزاد (1398) انتقال ژن‌های OsEXPA8، OsNAC5 وDRO1 به برنج به منظور تغییر ساختار ریشه و تحمل به خشکی. مجله علمی پژوهشی مهندسی ژنتیک و ایمنی زیستی. 8 (1) 77-89.
محسن پور مطهره، بابائیان جلودار نادعلی، توحیدفر مسعود، حبشی علی اکبر (1387) طراحی و ساخت چهار حامل پلاسمیدی نوترکیب مناسب برای انتقال ژن های کیتیناز، گلوکاناز و Bt به گیاهان. مجله علمی پژوهشی علوم کشاورزی و منابع طبیعی. 15 (4) 69-80.
محمدی زاده نگین، توحیدفر مسعود، محسن پور مطهره (1389) تراریزش گیاه گندم بواسطه اگروباکتریوم به منظور انتقال ژن‌های کیتیناز و گلوکاناز. مجله بیوتکنولوژی کشاورزی. 2 (1) 81-98.
References
An G, Watson BD, Chiang CC (1986) Transformation of tobacco, tomato, potato, and Arabidopsis thaliana using a binary Ti vector system. Plant Physiol 81 (1), 301–305.
Arai-Sanoh Y, Takai T, Yoshinaga S, et al. (2014) Deep rooting conferred by DEEPER ROOTING 1 enhances rice yield in paddy fields. Sci Rep 4 (1), 1-6.
Araki H, Morita S, Tatsumi J, Iijima M (2002) Physiol-morphological analysis on axile root growth in upland rice. Plant Prod Sci 5 (4), 286-293.
Bennett J, Cohen MB, Katiyar SK, et al. (1997) Enhancing insect resistance in rice through biotechnology. Adv in Insect Control: The Role of Transgenic Plants 75–93.
Chamani Mohasses F, Solouki M, Ghareyazie B, et al. (2020) Correlation between gene expression levels under drought stress and synonymous codon usage in rice plant by in-silico study. PLoS One 15 (8), e0237334.
Chamani Mohasses F, Soluki M, Ghareyazie B, et al. (2017) Isolation and functional analysis of PSTOL1 from wild species of rice. Gene Eng Biosafety J 6 (1), 1-10 (In Persian).
Chin JH, Gamuyao R, Dalid C, et al. (2011) Developing rice with high yield under phosphorus deficiency: Pup1 sequence to application. Plant Physiol 156 (3), 1202-1216.
Chin JH, Lu X, Haefele SM, et al. (2010) Development and application of gene-based markers for the major rice QTL Phosphorus uptake 1. Theor Appl Genet 120 (6), 1073-1086.
Dolatabadi B, Ranjbar G, Tohidfar M, Dehestani A (2014) Genetic transformation of Tomato with three pathogenesis-related protein genes for increased resistance to Fusarium oxysporum f. sp. lycopersici. J Plant Mol Breed 2 (1), 1–11.
Gamuyao R, Chin JH, Pariasca-tanaka J, et al. (2012) The protein kinase Pstol1 from traditional rice confers tolerance of phosphorus deficiency. Nature 488 (7412), 535–539.
Ghareyazie B, Alinia F, Menguito CA, et al. (1997) Enhanced resistance to two stem borers in an aromatic rice containing a synthetic cryIA(b) gene. Mol Breed 3 (5), 401–414.
Heuer S, Lu X, Chin JH, et al. (2009) Comparative sequence analyses of the major quantitative trait locus phosphorus uptake 1 (Pup1) reveal a complex genetic structure. Plant Biotechnol J 7 (5), 456–471.
Kondo M, Murty MVR, Aragones D V (2000) Characteristics of root growth and water uptake from soil in upland rice and maize under water stress. Soil Sci Plant Nutr 46 (3), 721–732.
Li L, Zhou Y, Cheng X, et al. (2003) Combinatorial modification of multiple lignin traits in trees through multigene cotransformation. Proc Natl Acad Sci 100 (8), 4939–4944.
Miyasaka SC, Habte M (2007) Plant mechanisms and mycorrhizal symbioses to increase phosphorus uptake efficiency. Commun Soil Sci Plant Anal 32 (7-8), 1101–1147.
Mohammadizadeh N, Tohidfar M, Mohsenpour M (2010) Agrobacterium-Mediated Transformation of Wheat (Triticum Aestivum) Using Chitinase and Glucanase Genes. Agric Biotechnol J 2 (1), 81-98 (In Persian).
Mohkami A, Marashi H, Shahriary Ahmadi F, et al. (2015) Evaluation of Agrobacterium-mediated Transformation of Chlamydomonas reinhardtii using a Synthetic amorpha-4, 11-diene Synthase Gene. J Cell Mol Res 7 (1), 53–58.
Mohsenpour M, Babaeian Jeloudar NA, Tohidfar M, Habashi AA (2008) Design and construction of four recombinant plasmid vectors containing chitinase, glucanase and BT genes, suitable for plant transformation. J Agric Sci Natur Resour 15 (4), 69-80 (In Persian).
Mohsenpour M, Tohidfar M, Jelodar NB, Jouzani GS (2015) Designing a new marker-free and tissue-specific platform for molecular farming applications. J Plant Biochem Biotechnol 24 (4), 433-440.
Ozawa K (2012) A high-efficiency Agrobacterium-mediated transformation system of rice (Oryza sativa L.). In: Transgenic Plants. Springer, pp 51–57.
Raufi A, Tohidfar M, Soluki M, Mohsenpour M (2012) Isolation and Cloning of Two Genes from PR1 Family and Construction of Treble Plasmids Containing 3 Groups of Genes for Producing Transformed Plants Resistant to Fungal Diseases. Agric Biotechnol J 3 (2), 27–46 (In Persian).
Sambrook J, Fritsch EF, Maniatis T (1989) Molecular cloning: a laboratory manual. Cold spring harbor laboratory press.
Sánchez PA, Salinas JG (1981) Low-input technology for managing Oxisols and Ultisols in tropical America. Adv. Agron 34, 279-406.
Schachtman DP (1998) Phosphorus Uptake by Plants: From Soil to Cell. PLANT Physiol 116 (2), 447–453.
Shahbazi K, Besharati H (2013) Overview of agricultural soil fertility status of Iran. L Manag J 1 (1), 1–15.
Uga Y, Ebana K, Abe J, et al. (2009) Variation in root morphology and anatomy among accessions of cultivated rice (Oryza sativa L.) with different genetic backgrounds. Breed Sci 59 (1), 87–93.
Uga Y, Kitomi Y, Yamamoto E, et al. (2015) A QTL for root growth angle on rice chromosome 7 is involved in the genetic pathway of DEEPER ROOTING 1. Rice 8 (1), 1-8.
Uga Y, Okuno K, Yano M (2011) Dro1, a major QTL involved in deep rooting of rice under upland field conditions. J Exp Bot 62 (8), 2485–2494.
Uga Y, Sugimoto K, Ogawa S, et al. (2013) Control of root system architecture by DEEPER ROOTING 1 increases rice yield under drought conditions. Nat Genet 45 (9) 1097-1102.
Wissuwa M, Wegner J, Ae N, Yano M (2002) Substitution mapping of Pup1: a major QTL increasing phosphorus uptake of rice from a phosphorus-deficient soil. Theor Appl Genet 105 (6-7) 890–897.
Ye X, Al-Babili S, Klöti A, et al. (2000) Engineering the provitamin A (β-carotene) biosynthetic pathway into (carotenoid-free) rice endosperm. Science 287 (5451), 303–305.
Zandi M, Hosseini R, Mohsenpour M, et al. (2019) Transformation of DRO1, OsNAC5, OsEXPA8 genes in order to improve rice root architecture modification and improved drought tolerance in rice. Gene Eng Biosafety J 8 (1), 77-89 (In Persian). | ||
|
آمار تعداد مشاهده مقاله: 949 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 543 |
||