
تعداد نشریات | 26 |
تعداد شمارهها | 447 |
تعداد مقالات | 4,557 |
تعداد مشاهده مقاله | 5,379,991 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 3,580,057 |
القای پاسخهای ایمنی اختصاصی در موشهای تلقیح شده با پلاسمید یوکاریوتی بیان کننده اپیتوپ G1 از ویروس تب بی دوام گاوی | ||
مجله بیوتکنولوژی کشاورزی | ||
دوره 15، شماره 2، خرداد 1402، صفحه 45-62 اصل مقاله (1.19 M) | ||
نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22103/jab.2023.19991.1419 | ||
نویسندگان | ||
رضا پسندیده* 1؛ مسعودرضا صیفی آباد شاپوری2؛ محمد تقی نصیری3 | ||
1Assistant Professor of Iranian Shrimp Research Center (ISRC), Iran. Bushehr | ||
2استاد گروه پاتوبیولوژی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران | ||
3استاد گروه علوم دامی، دانشکده علوم دامی و صنایع غذایی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی خوزستان، اهواز، ایران | ||
چکیده | ||
هدف: تب بی دوام گاوی (BEF) یک بیماری ویروسی قابل انتقال توسط بندپایان در گاو و گاومیش آبی است که موجب بروز خسارات اقتصادی و تجاری قابل توجهی بر صنعت دامپروری میگردد. گلیکوپروتئین G از ویروس تب بیدوام گاوی (BEFV) به عنوان یک کاندیدای احتمالی جهت تولید واکسنهای نوترکیب در برابر این بیماری شناخته شده است. هدف از این مطالعه، بررسی ایمنیزایی یک پلاسمید یوکاریوتی بیان کننده اپیتوپ G1 از ژن گلیکوپروتئین G ویروس تب بیدوام گاوی به عنوان یک واکسن DNA احتمالی در موش بود. مواد و روشها: ابتدا پلاسمید یوکاریوتی بیان کننده اپیتوپ G1 تحت عنوان pEGFPN1-G1 ساخته شد. پس از انتقال سازه نوترکیب pEGFPN1-G1 به سلولهای جنینی کلیه انسان (HEK 293)، بیان پروتئین G1 با استفاده از روش ایمونوفلورسنس غیر مستقیم (IFA) تایید شد. سپس به منظور انجام آزمایشهای ایمنیزایی، موشهای ماده با سن شش تا هشت هفته در چهار گروه پنج تایی، سه مرتبه و به صورت داخل عضلانی با سازه نوترکیب pEGFPN1-G1، واکسن تجاری تب بی دوام گاوی، پلاسمید pEGFP-N1 و بافر PBS 1X با فواصل زمانی دو هفتهای مورد تلقیح قرار گرفتند. 14 روز پس از آخرین تزریق، حیوانات خونگیری شدند و سرم آنها به منظور بررسی تولید آنتیبادیهای اختصاصی علیه پروتئین G1 در آزمایشهای ایمونوبلات، الایزا (ELISA) و خنثی سازی ویروس (VN) مورد استفاده قرار گرفت. مقادیر چگالی نوری تمامی نمونههای سرمی بدست آمده از آزمایش الایزا در قالب یک طرح کاملاً تصادفی با چهار تیمار و پنج تکرار با استفاده از نرم افزار SAS مورد آنالیز آماری قرار گرفت. نتایج: نتایج آزمایشهای ایمونوبلات و آنالیز آماری نمونههای سرمی بدست آمده از آزمایش الایزا نشان دادند که سازه نوترکیب pEGFPN1-G1 توانست موجب القای ایمنی و تولید آنتیبادی اختصاصی علیه آنتیژن G1 در موشها شود. با این حال، سرم موشهای تلقیح شده با این پلاسمید نتوانست ویروس تب بی دوام گاوی در حال تکثیر را خنثی کند. نتیجهگیری: از آنجایی که سازه نوترکیب pEGFPN1-G1 توانایی تولید آنتیبادیهای اختصاصی علیه آنتی ژن G1 از ویروس تب بی دوام گاوی را در مدل حیوانی داشت، نتایج این مطالعه میتواند گامی در جهت توسعه واکسنهای نوین برای بیماری تب بی دوام گاوی در آینده باشد. | ||
کلیدواژهها | ||
ایمنیزایی؛ تب بیدوام گاوی؛ سازه نوترکیب pEGFPN1-G1؛ واکسن DNA | ||
مراجع | ||
پسندیده رضا؛ بیگی نصیری محمدتقی؛ صیفی آباد شاپوری مسعودرضا (1398) بیان اپیتوپ G1 از ژن گلیکوپروتئین G ویروس تب بیدوام گاوی توسط سازه نوترکیب pET24-G1 در اشرشیاکلی. مجله دامپزشکی ایران 15، 24-15.
پسندیده رضا؛ بیگی نصیری محمدتقی؛ صیفی آباد شاپوری مسعودرضا و همکاران (1395) همسانهسازی مولکولی و تعیین توالی ژن گلیکوپروتئین G ویروس تب بیدوام گاوی در اشرشیاکلی. مجله پژوهشهای علوم دامی ایران 8، 520-511 .
پسندیده رضا؛ بیگی نصیری محمدتقی؛ صیفی آباد شاپوری مسعودرضا و همکاران (1396) طراحی پلاسمید یوکاریوتی بیان کننده اپیتوپ G1 از ژن گلیکوپروتئین G ویروس تب بیدوام گاوی در سلولهای جنینی کلیه انسان. مجله دامپزشکی ایران 13، 27-19.
References
Aziz-Boaron O, Leibovitz K, Gelman B et al. (2013) Safety, immunogenicity and duration of immunity elicited by an inactivated bovine ephemeral fever vaccine. PloS one 8, e82217.
Cheng L-T, Zeng Y-J, Chu C-Y et al. (2019) Development of a quick dot blot assay for the titering of bovine ephemeral fever virus. BMC Vet Res 15, 1-7.
Corr M, Lee DJ, Carson DA et al. (1996) Gene vaccination with naked plasmid DNA: mechanism of CTL priming. J Exp Med 184, 1555-1560.
Cybinski D, Davis S, Zakrzewski H (1992) Antigenic variation of the bovine ephemeral fever virus glycoprotein. Arch Virol 124, 211-224.
Cybinski D, Walker P, Byrne K et al. (1990) Mapping of antigenic sites on the bovine ephemeral fever virus glycoprotein using monoclonal antibodies. J Gen Virol 71, 2065-2072.
Fynan EF, Webster RG, Fuller DH et al. (1993) DNA vaccines: protective immunizations by parenteral, mucosal, and gene-gun inoculations. Proc Natl Acad Sci USA. 90, 11478-11482.
George TS, Standfast H (2019) Bovine ephemeral fever. In: The arboviruses: epidemiology and ecology. CRC Press. pp. 71-86.
Gurunathan S, Klinman DM, Seder RA (2000) DNA vaccines: immunology, application, and optimization. Annu Rev Immunol 18, 927-974.
Hertig C, Pye AD, Hyatt AD et al. (1996) Vaccinia virus-expressed bovine ephemeral fever virus G but not GNS glycoprotein induces neutralizing antibodies and protects against experimental infection. J Gen Virol 77, 631-640.
Hou P, Zhao G, He C et al. (2018) Biopanning of polypeptides binding to bovine ephemeral fever virus G1 protein from phage display peptide library. BMC Vet Res 14, 1-9.
Johal J, Gresty K, Kongsuwan K et al. (2008) Antigenic characterization of bovine ephemeral fever rhabdovirus G and GNS glycoproteins expressed from recombinant baculoviruses. Arch Virol 153, 1657-1665.
Kato T, Aizawa M, Takayoshi K et al. (2009) Phylogenetic relationships of the G gene sequence of bovine ephemeral fever virus isolated in Japan, Taiwan and Australia. Vet Microbiol 137, 217-223.
Khan KH (2013) DNA vaccines: roles against diseases. Germs 3, 26.
Lee F (2019) Bovine ephemeral fever in Asia: recent status and research gaps. Viruses 11, 412.
Mackerras IM, Mackerras MJ, Burnet F (1940) Experimental Studies of Ephemeral Fever in Australian Cattle. Bulletin of the Council for Scientific and Industrial Research, Australia.
Pasandideh R, Beygi Nassiri MT, Seyfi Abad Shapouri MR (2018) Expression of the G1 epitope of bovine ephemeral fever virus G glycoprotein gene by pET24-G1 recombinant construct in Escherichia coli. Iran J Vet Res 15, 15-24. (In Persian)
Pasandideh R, Beygi Nassiri MT, Seyfi Abad Shapouri MR, Fayazi J, Roshanfekr H, Lotfi M (2016) Cloning and sequencing of G glycoprotein gene of bovine ephemeral fever virus in Escherichia coli. Int J Appl Sci Res 8, 511-519. (In Persian)
Pasandideh R, Beygi Nassiri MT, Seyfi Abad Shapouri MR, Fayazi J, Roshanfekr H, Lotfi M (2018) Designing of the expressing eukaryotic plasmid of the G1 epitope of bovine ephemeral fever virus G glycoprotein in human embryonic kidney cells. Iran J Vet Res 13, 19-27. (In Persian)
Pasandideh R, Seyfi Abad Shapouri MR, Beigi Nassiri MT (2018) Immunogenicity of a plasmid DNA vaccine encoding G1 epitope of bovine ephemeral fever virus G glycoprotein in mice. Onderstepoort J Vet Res 85, 1-6.
Pasandideh R, Seyfi Abad Shapouri MR, Beigi Nassiri MT (2019) Production of monoclonal antibody against prokaryotically expressed G1 protein of bovine ephemeral fever virus. Iran J Appl Anim Sci 9, 51-57.
Robinson H, Hunt L, Webster R (1993) Protection against a lethal influenza virus challenge by immunization with a haemagglutinin-expressing plasmid DNA. Vaccine 11, 957-960.
Sakaguchi M, Nakamura H, Sonoda K et al. (1996) Protection of chickens from Newcastle disease by vaccination with a linear plasmid DNA expressing the F protein of Newcastle disease virus. Vaccine 14, 747-752.
Shah MAA, Song X, Xu L et al. (2011) Construction of DNA vaccines encoding Eimeria acervulina cSZ-2 with chicken IL-2 and IFN-γ and their efficacy against poultry coccidiosis. Res Vet Sci 90, 72-77.
Stokes JE, Darpel KE, Gubbins S et al. (2020) Investigation of bovine ephemeral fever virus transmission by putative dipteran vectors under experimental conditions. Parasit Vectors 13, 1-11.
Tobin C, Bailey DW, Trotter MG et al. (2020) Sensor based disease detection: A case study using accelerometers to recognize symptoms of Bovine Ephemeral Fever. Comput Electron Agric 175, 105605.
Trinidad L, Blasdell KR, Joubert DA et al. (2014) Evolution of bovine ephemeral fever virus in the Australian episystem. J Virol 88, 1525-1535.
Uren M, Walker P, Zakrzewski H et al. (1994) Effective vaccination of cattle using the virion G protein of bovine ephemeral fever virus as an antigen. Vaccine 12, 845-852.
Walker PJ, Klement E (2015) Epidemiology and control of bovine ephemeral fever. Vet Res 46, 1-19.
Wallace DB, Viljoen GJ (2005) Immune responses to recombinants of the South African vaccine strain of lumpy skin disease virus generated by using thymidine kinase gene insertion. Vaccine 23, 3061-3067.
Zheng F, Qiu C (2012) Phylogenetic relationships of the glycoprotein gene of bovine ephemeral fever virus isolated from mainland China, Taiwan, Japan, Turkey, Israel and Australia. Virol J 9, 1-8. | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 246 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 352 |