
تعداد نشریات | 26 |
تعداد شمارهها | 447 |
تعداد مقالات | 4,557 |
تعداد مشاهده مقاله | 5,380,003 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 3,580,074 |
تاثیر ترکیب هورمونی بر پرآوری درون شیشه ای گیاه زنجبیل (Zingiber officinale Roscoe) | ||
مجله بیوتکنولوژی کشاورزی | ||
دوره 16، شماره 2، خرداد 1403، صفحه 91-108 اصل مقاله (2.3 M) | ||
نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22103/jab.2024.22032.1505 | ||
نویسندگان | ||
نسرین مشتاقی* 1؛ محمد نوروزی2؛ حسن مرعشی3؛ فرشته مشیری4 | ||
1نویسنده مسئول: دانشیار، گروه بیوتکنولوژی و به نژادی گیاهی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه فردوسی مشهد، مشهد، ایران. | ||
2دانشجوی کارشناسی ارشد، گروه بیوتکنولوژی و به نژادی گیاهی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه فردوسی مشهد | ||
3استاد، گروه بیوتکنولوژی و به نژادی گیاهی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه فردوسی مشهد، مشهد | ||
4کارشناس آموزشی، دانشکده کشاورزی گروه بیوتکنولوژی و به نژادی گیاهی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه فردوسی مشهد، مشهد، ایران. | ||
چکیده | ||
هدف: گیاه زنجبیل (Zingiber officinale Roscoe) یکی از گیاهان خانواده Zingiberaceae بوده و از مهمترین ادویههایجهان است که ریزومی تند و معطر تولید میکند و خواص درمانی زیادی دارد. این گیاه توانایی تولید بذر را بهدلیل عقیمی شدید ندارد. تکثیر گیاه از طریق ریزوم، هزینههای کشت و احتمال حمله عوامل بیماریزا را بالا میبرد. بنابراین استفاده از روشهای تکثیر کشت بافت میتواند کمک موثری در جهت افزایش نرخ تکثیر و کنترل آلودگی داشته باشد. برای حصول نتیجه بهتر برای کشتبافت، ریزنمونه باید از منابع مادری سالم، تازه و قوی حاصل شود. به دلیل آن که در کالوس و جنینزایی سوماتیکی امکان ایجاد موتاسیون وجود دارد معمولا برای تکثیر از این روشها استفاده نمیشود و بهتر است از ریزنمونههای نوکشاخه و یا جوانهریزوم که امکان حفظ خصوصیات ژنتیکی را دارند استفاده شود. مواد و روشها: جهت تکثیر مستقیم، از ریزنمونه ساقهی برش خورده گیاهبالغ زنجبیل، برگها، طوقه و قطعات برش خورده جوانه ریزوم زنجبیل در محیط کشت پایهی MS با 9 نوع ترکیب هورمونی مختلف استفاده شد که در آنها از هورمونهای BAP و NAA به تنهایی و یا در ترکیب با هم در غلظتهایمختلف بهمنظور شاخه زایی استفاده گردید. ریزنمونه ها پس از شاخهزایی به محیط کشت MS حاوی یک میلیگرم بر لیترNAA و IBA جهتریشهزاییمنتقل شدند. گیاهچههای بدست آمده در گلدان کاشته شده و به تدریج با محیط بیرونی سازگار شدند. نتایج: بهترین ریز نمونه برای تکثیر سریع و آسان زنجبیل جوانه سالم ریزوم این گیاه بود. بهترین تیمار برای شاخهزایی، 2میلیگرم بر لیتر از هورمون BAP و یک میلیگرم بر لیتر از هورمون NAA در محیطکشت MS بود که 7شاخه در ریزوم جوانه تولید نمود. بهترین تیمار برای ریشهزایی، در محیطکشت MS حاوی یک میلیگرم بر لیتر از هورمون NAA بود که 7عدد ریشه را در شاخه تولید نمود. در ادامه، گیاهچههای کشتبافتی در گلدان حاوی خاک باغچه و کوکوپیت به نسبت 1:1 با موفقیت با محیط گلخانه سازگاری یافتند. نتیجه گیری: نتایج پژوهش حاضر نشان داد، ریزازدیادی گیاه زنجبیل تحت تاثیر نوع تنظیمکنندههای رشد و غلظت آنها در محیطکشت MS قرار میگیرد و ریزنمونه جوانه ریزوم برای تکثیر مستقیم دارای نتایج مطلوبی میباشد. | ||
کلیدواژهها | ||
اکسین؛ جوانه؛ ریزوم؛ زنجبیل؛ کشت بافت | ||
مراجع | ||
بیگلری فراش راضیه، نیک فکر روح الله (1400) ریزازدیادی و تکثیر درون شیشه ای گیاه زنجبیل (Zingiber officinale Rosc). اولین همایش ملی پژوهش های جامعه محور در کشاورزی، منابع طبیعی و محیط زیست، همدان، ایران.
References
Abbas MS, Taha HS, Aly UI, et al. (2011) In vitro propagation of ginger (Zingiber officinale Roscoe). J Genet Eng Biotechnol 9(2), 165-172.
Alqadasi AS, Al-madhagi I, Al-kershy, et al. (2022) Effect of Cytokinin Type and pH Level on Regeneration of Ginger in vitro. J Hortic Sci 9(3), 265-274.
Arimura C, Finger F, Casali V (2000) Effect of ANA and BAP on ginger (Zingiber officinale Roscoe) sprouting in solid and liquid medium. Rev Bras de Plantas Medicinais 2(2), 23-26.
Balachandran S, Bhat S, Chandel K (1990) In vitro clonal multiplication of turmeric (Curcuma spp.) and ginger (Zingiber officinale Rosc.). Plant Cell Rep 8, 521-524.
Babu K, Ravindran P, Peter K (1997) Protocols for micropropagation in spices and aromatic crops. (p. 35). (IISR).
Bhagyalakshmi B, Singh NS (1988) Meristem culture and micropropagation of a variety of ginger (Zingiber officinale Rosc.) with a high yield of oleoresin. J Hortic Sci 63(2), 321-327.
Biglari Farash R, Nikfekr R (2021) Micropropagation and in vitro propagation of ginger plant (Zingiber officinale Rosc.). The first national conference of community-oriented researches in agriculture, natural resources and environment, Hamedan, Iran (In Persian).
Cher CZ, Pavallekoodi G, Sreeramanan S (2016) Micropropagation of ginger (Zingiber officinale var. rubrum) using buds from microshoots. Pak J Bot 48(3), 1153-1158.
Kavyashree R (2009) An efficient in vitro protocol for clonal multiplication of Ginger–var. Varada. Indian J Agric Sci 8, 328-331.
Kambaska K, Santilata S (2009) Effect of plant growth regulator on micropropagation of ginger (Zingiber officinale Rosc.) cv-Suprava and Suruchi. J Agric 5(2), 271-280.
Li C, Li J, Jiang F, et al. (2021) Vasculoprotective effects of ginger (Zingiber officinale Roscoe) and underlying molecular mechanisms. Food Funct 12(5), 1897-1913.
Malabadi RB (2002) In vitro propagation of spiral ginger [Costus speciosus (Koen.) Sm.]. Indian J Genet Plant Breed 62(03), 277-278.
Nair KP (2019) Turmeric (Curcuma Longa L.) and Ginger (Zingiber Officinale Rosc.)-World's Invaluable Medicinal Spices: The Agronomy and Economy of Turmeric and Ginger. Springer.
Nkere C, Mbanaso E (2010) Optimizing concentrations of growth regulators for in-vitro ginger propagation. J Agrobiol 27(2), 61.
Pandey YR, Sagwansupyakorn C, Sahavacharin O, et al. (1997) In vitro propagation of ginger (Zingiber officinale Roscoe). Agric Nat Resour 31(1), 81-86.
Palai S, Rout G, Samantaray S, et al. (2000) Biochemical changes during in vitro organogenesis in Zingiber officinale Rosc. J Plant Biol 27(2), 153-160.
Ravindran P, Shiva K, Babu KN, et al. (2005) Ginger. Advances in Spices Research: History and Achievements of Spices Research in India Since Independence, Ravindran PN Babu KN Shiva and JA Kallupurackal (Eds.). J Agron Jodhpur India 367-368.
Sukarnih T, Rudiyana Y, Hanifah N, et al. (2021) Micropropagation of red ginger (Zingiber officinale Rosc. Var. Rubrum) using several types of cytokinins. J Phys Conf
Sharma T, Singh B (1997) High-frequency in vitro multiplication of disease-free Zingiber officinale Rosc. Plant Cell Rep 17(1), 68-72.
Zhou J, Guo F, Fu J, et al. (2020) In vitro polyploid induction using colchicine for Zingiber officinale Roscoe cv. ‘Fengtou’ginger. Plant Cell Tissue Organ Cult 142, 87-94. | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 602 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 174 |