
تعداد نشریات | 26 |
تعداد شمارهها | 447 |
تعداد مقالات | 4,557 |
تعداد مشاهده مقاله | 5,379,993 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 3,580,060 |
بهینه سازی کالوس¬زایی و سوسپانسیون سلولی پروانش (Catharanthus roseus) | ||
مجله بیوتکنولوژی کشاورزی | ||
مقاله 1، دوره 4، شماره 1، شهریور 1391، صفحه 1-18 اصل مقاله (257.53 K) | ||
نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22103/jab.2012.464 | ||
نویسندگان | ||
جعفر احمدی* 1؛ راضیه محمدی2؛ قاسمعلی گروسی3؛ رامین حسینی3 | ||
1دانشیار دانشگاه بین المللی امام خمینی (ره) قزوین | ||
2کارشناس ارشد دانشگاه بین المللی امام خمینی (ره) قزوین | ||
3استادیار دانشگاه بین المللی امام خمینی (ره) قزوین | ||
چکیده | ||
پروانش (Catharanthus roseus) گیاهی دارویی است که به دلیل تولید آلکالوئید های فراوان از جمله وینکریستین و وینبلاستین اهمیت دارد. کشت درون شیشهای پروانش منابع مستعدی از بافت یا اندامها از جمله کالوس، سوسپانسیون سلولی و گیاهچه را برای تولید متابولیتهای ثانویه فراهم میکند. از آنجا که برای تولید انبوه کالوس و بهینه سازی سوسپانسیون سلولی جهت استخراج متابولیت های ثانویه مطالعات اندکی صورت گرفته است. برای این منظور دو آزمایش جداگانه بهینه سازی کالوسزایی و یک آزمایش بهینه سازی سوسپانسیون سلولی انجام شد. آزمایش اول کالوس زایی در قالب فاکتوریل با سه ریزنمونه ریشه، ساقه و برگ و ترکیب سطوح هومونهای BAP + 2,4-D و آزمایش دوم در قالب فاکتوریل با شش ریزنمونه برگ برون شیشه، برگ درون شیشه، ساقه، ریشه، گره و بذر و ده ترکیب هورمونی اجرا شد. آزمایش بهینه سازی سوسپانسیون سلولی نیز با شش تیمار هورمونی مختلف به همراه تیمار شاهد (فاقد تنظیم کننده) در قالب طرح آماری کاملا تصادفی اجرا شد. مقایسه میانگین نشان داد که بافت برگ بیشترین کالوسزایی داشت و قطعات ریشه و ساقه در رتبههای بعدی کالزایی بودند. در این آزمایش تیمارهای یک میلی گرم در لیتر 2,4-D به تنهایی و یا به همراه 5/0 میلی گرم در لیتر BAP یا KN بیشترین کالوس را تولید کردند. در سوسپانسیون سلولی بیشترین وزن خشک سلولی در محیط کشتهای یک میلی گرم در لیتر 2,4-D و دو میلی گرم در لیتر 2,4-D به همراه یک میلی گرم در لیتر BAP اندازه گیری شد. | ||
کلیدواژهها | ||
پروانش؛ کالوس؛ سوسپانسیون سلولی؛ درون شیشه | ||
اصل مقاله | ||
periwinkle, callus. Suspension culture, In vitro | ||
مراجع | ||
Chen LJ, Zhu XY, Gu L, Wu J (2005). Efficient callus induction and plant regeneration from anther of Chinese narcissus Narcissus tazetta L. var. chinensis Roem. Plant Cell Reports 24: 401-407.
Dutta A, Singh S, Kumar S, Sen J (2007). Transcript profiling of terpenoid indole alkaloid pathway genes and regulators reveals strong expression of repressors in Catharanthus roseus cell cultures. Plant Cell Reports 26: 907-915.
Gurel S, Gurel E, Kaya Z (2001). Callus development and indirect shoot regeneration from seedling of sugar beet (Beta vulgaris L.) cultured in vitro. Turkish Journal of Botany 25: 25-33.
Hussain Z, Haroon M, Bano R, Rashid H, Chaudhry Z (2010). Protocol optimization for efficient callus induction and regeneration in three Pakistani rice cultivars. Pakistan Journal of Botany 42: 879-887.
Kwon TH, Abe T, Sasahara T (1993). Efficient callus induction and plant regeneration in Sesamum species. Plant Tissue Culture Letters 10: 260-266.
Lee E, Mobin M, Hahn EJ, Paek KY (2006). Effects of sucrose, [noculum density, auxins, and aeration volume on cell growth of Gymnema sylvestre. Journal of Plant Biology 49: 427-431.
Mujib A, Bandhyopadhyay S, Ghosh PD (2000). Tissue culture derived plantlet variation in Caladium an important ornamental. Plant Cell, Tissue and Organ Culture 10: 149-155.
Mungole A, Awati R, Dey S, Chaturvedi A, Zanwar P (2009). In-vitro callus induction and shoot regeneration in Ipomoea obscura (L.): potent Indian medicinal plant. Indian Journal of Science and Technology 2: 24-26.
Ozgen M, Türet M, Altinok S, Sancak C (1998). Efficient callus induction and plant regeneration from mature embryo culture of winter wheat (Triticum aestivum L.) genotypes. Plant Cell Reports 18: 331-335.
Phillips GC, Hubstenberger JF, Hansen EE (1995). Plant regeneration by organogenesis from callus and cell suspension cultures. In: Gamborg OL, Phillips GC (eds), Plant Cell, Tissue and Organ Culture, pp. 67-78. Heidelberg: Springer and Verla.
Pietrosiuk A, Furmanowa M, Lata B (2007). Catharanthus roseus: micropropagation and in vitro techniques. Phytochem Reviews 6: 459-473.
Piri Kh, Nazarian F (2001). Plant Tissue Culture. Bu Ali Sina Press.
Sato F, Hashimoto T, Hachiya A (2001). Metabolic engineering of plant alkaloid biosynthesis. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 98: 367-372.
Senoussi MM, Nora B, Joe C (2009). Impact of hypoxia on the growth and alkaloid accumulation in Catharanthus roseus cell suspension. Acta Physiologiae Plantarum 31: 359–362.
Shirin F, Hossain M, Kabir MF, Roy M, Sarker SR (2007). Callus induction and plant regeneration from intermodal and leaf explants of four potato (Solanum tuberosum L.) cultivars. World Journal of Agricultural Sciences 3: 1-6.
Taha HS, El-Bahr MK, Seif-El-Nasr MM (2008). In vitro studies on egyptian Catharanthus roseus (L.) G. Don.: 1- calli Production, direct shootlets Regeneration and alkaloids determination. Journal of Applied Sciences Research 4: 1017-1022.
Valluri JV (2009). Bioreactor production of secondary metabolites from cell cultures of Periwinkle and Sandalwood. Methods in Molecular Biology 547: 325-335.
Verpoorte R, van der Heijden R, Van Gulik W (1991). Plant biotechnology for the production of alkaloids: Present status and prospects. In: Brossi A, (ed(. The Alkaloids. Vol 40. New York: Academic Press.
WaiLeng L, LaiKeng C (2003). Establishment of Orthosiphon stamineus cell suspension culture for cell growth. Plant Cell, Tissue and Organ Culture 78: 101-106.
Waileng LW, LaiKeng C (2004). Plant regeneration from stem nodal segments of Orthosiphon stamineus banth., a medicinal plant with diuretic activity. In vitro Cellular and Developmental Biology - Plant 40: 115-118.
Xu M, Dong J (2005). Nitric oxide stimulates indole alkaloid production in Catharanthus roseus cell suspension cultures through a protein kinase-dependent signal pathway. Enzyme and Microbial Technology 37: 49-53.
Yokoyama M, Inomata S (1998). Catharanthus roseus (periwinkle): in vitro culture and high level production of Arbutine by biotransformation. Biotechnology in Agriculture and Forestry 41: 67-80.
Zhao J, Zhu WH, Hu Q, Guo YQ (2001). Compact callus cluster suspension culture of Catharanthus roseus with enhanced indol alkaloid biosynthesis. In Vitro Cellular and Developmental Biology - Plant 37: 68-72.
Zhao J, Zhu WH, Hu Q (2001). Effects of light and plant growth regulators on the biosynthesis of vindoline and other indole alkaloids in Catharanthus roseus callus cultures. Plant Growth Regulation 33: 43-49.
| ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 3,373 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 1,795 |