
تعداد نشریات | 26 |
تعداد شمارهها | 447 |
تعداد مقالات | 4,557 |
تعداد مشاهده مقاله | 5,380,003 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 3,580,069 |
ارزیابی پتانسیل باززایی لایههای مختلف فلسی پیاز آماریلیس (Hippeastrum × johnsonii) تحت تأثیر تنظیمکنندههای رشد مختلف | ||
مجله بیوتکنولوژی کشاورزی | ||
مقاله 1، دوره 11، شماره 4، اسفند 1398، صفحه 1-18 اصل مقاله (3.48 M) | ||
نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22103/jab.2020.2520 | ||
نویسندگان | ||
سیده مهدیه خرازی* 1؛ علی تهرانیفر2؛ احمد شریفی3؛ عبدالرضا باقری4 | ||
1عضو هیئت علمی گروه بیوتکنولوژی گیاهان زینتی جهاد دانشگاهی خراسان رضوی | ||
2عضو هیئت علمی گروه علوم باغبانی و مهندسی فضای سبز، دانشکده کشاورزی، دانشگاه فردوسی مشهد، ایران | ||
3جهاد دانشگاهی جهاد دانشگاهی | ||
4عضو هیئت علمی گروه بیوتکنولوژی و به نژادی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه فردوسی مشهد، ایران | ||
چکیده | ||
هدف: آماریلیس یکی از گیاهان زینتی پیازی است که تکثیر آن در شرایط طبیعی به کندی صورت میگیرد. لذا کاربرد تکنیک کشت بافت میتواند راهکار مناسبی جهت افزایش ضریب تکثیر این گیاه زینتی باشد. مواد و روشها: بدین منظور آزمایشی بصورت فاکتوریل (4×2×4) و در قالب طرح کاملا تصادفی با 3 تکرار و 5 مشاهده در هر تکرار طراحی گردید تا اثر غلظتهای مختلف هورمون BA و Kin (0، 5/0، 1 و 2 میلیگرم در لیتر) در ترکیب با 1/0 میلیگرم در لیتر NAA بر میزان باززایی ریزنمونههای مختلف فلس جفتی آماریلیس مورد ارزیابی قرار گیرد. ریزنمونهها به 4 نمونه فلس جفتی تقسیم و گروهبندی شدند، بهطوریکه در گروه یک، خارجیترین نمونههای فلس جفتی و در گروه چهار، داخلیترین نمونههای فلس جفتی قرار گرفتند. نتایج: نتایج نشان داد که قطر پیازچه تولید شده تحت تأثیر موقعیت فلس جفتی در پیاز مادری قرار گرفت. فلسهای جفتی گروه یک که از لایههای خارجیتر پیاز تهیه شده بودند، پیازچههای قطورتری را تولید نمودند، این در حالی است که فلسهای جفتی گروه چهار، کمترین میانگین این صفت را به خود اختصاص دادند. از سوی دیگر ریزنمونههای کشت شده در محیط کشت حاوی 5/0 میلیگرم در لیتر هورمون BA به همراه 1/0 میلیگرم در لیتر هورمون NAA، بیشترین قطر پیازچه باززا شده را به خود اختصاص دادند. نتیجه گیری: لذا کاربرد فلس جفتی گروه یک و محیط کشت MS حاوی 5/0 میلیگرم در لیتر هورمون BA به همراه 1/0 میلیگرم در لیتر هورمون NAA جهت تکثیر ریزنمونههای فلس جفتی آماریلیس توصیه میگردد. | ||
کلیدواژهها | ||
قطر پیازچه باززا شده؛ هورمون BA؛ محیط کشت؛ ریزنمونه | ||
مراجع | ||
امانی شهلا، زارعی حسین، علیزاده اجیرلو اسدالله، مشایخی کامبیز (1390) باززایی پیازچه از ریزنمونههای تک فلسی با طبق و بدون طبق پیاز آماریلیس (Hippeastrum hybridum) در شرایط کشت درونشیشهای. اولین کنگره ملی علوم و فناوریهای نوین کشاورزی، زنجان، دانشگاه زنجان. شریفی احمد، مشتاقی نسرین، باقری عبدالرضا (1389) کشت بافت گیاهی کاربردی، چاپ اول، انتشارات جهاد دانشگاهی مشهد، مشهد. معمار مشرفی معصومه، معینی احمد، توسلیان ایرج (1381) بررسی اثر تنظیم کنندههای رشدNAA ، BAP، ریزنمونه، موقعیتهای مختلف فلس و دوره نوری بر کشت بافت گل سوسن چلچراغ. مجله علوم زراعی ایران 4، 253-261.
References
Alkema HY (1975) Vegetative propagation of daffodils by double-scaling. Acta Hortic 47, 193-199.
Amani Sh, Zarei H, Alizadeh Ejirloo S, Kambiz Mashayekhi K (2011) Bulblet regeneration from single and twin scale of amaryllis (Hippeastrum hybridum) during in vitro culture. First National Congress of Science and Technology in Agriculture, Zanjan, Zanjan University (In Persian).
Aslam F, Habib S, Naz S (2012) Effect of different phytohormones on plant regeneration of Amaryllis hippeastrum. Pakistan J Sci 64, 54-60.
Brown SP, Black RJ (2007) Amaryllis, University of Florida, IFAS Extension.
Chakrabarty D, Gupta VN, Datta SK (2007) Varietal identification and assessment of genetic relationships in Hippeastrum using RAPD markers. Plant Biotechnol 1, 211-217.
Clemson Extension, (1995) Understanding and producing amaryllis. Clemson Extension.
De Bruyn MH (1997) Micropropagation of amaryllis (Hippeastrum × hybridum). In: Bajaj YPS Biotechnology in Agriculture and Forestry 40, High-Tech and Micropropagation VI. Springer Verlag, Heidelberg, New York.
Dohare SR (1989) Amaryllis and Hippeastrum. In: Commercial Flowers. Bose TK, Maiti RG, Dhva RS, Eds.). Naya prokash, Calcutta, 573-593.
El-Naggar H, Osman A, Sewedan E (2012) In vitro propagation and organogenesis of Lilium ‘Prato’. Afr J Biotechnol 11, 14771-14776.
Fennell CW (2002) Micropropagation and secondary metabolite production in Crinum macowanii. PhD thesis, University of Natal, Pietermaritzburg.pp. 37-46.
Han BH, Yu HJ, Yae BW, Peak KY (2004) In vitro micropropagation of Lilium longiflorum ‘Georgia’ by shoot formation as influenced by addition of liquid medium. Sci Hortic 103, 39-49.
Hanks GR, Rees AR (1979) Twin-scale propagation of narcissus: a review. Sci Hortic 10, 1-14.
Memar Mosharrafi M, Moeini A, Tavasolian A (2002) Effect of NAA, BAP growth regulators, explants, different positions of scales and light period on tissue culture of Lilium ledebourii. J Iranian Crop Sci 4, 253-261 (in Persian).
Murashige T, Skoog F (1962) A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiol Plant 15, 473-497.
Okubo H (1993) Hippeastrum (Amaryllis). p. 321-334. In: De Hertogh AA, Le Nard M (eds.), The physiology of flower bulbs, Elsevier Publ., Amsterdam.
Rahimi M, Daneshvar MH, Heidari M (2014) Propagation and bulb formation of Fritilaria (Fritillaria imperialis L.) via in vitro culture. IJPAES 4, 707-710.
Rice LJ, Finnie JF, Van Staden J (2011) In vitro bulblet production of Brunsvigia undulata from twin-scales. S Afr J Bot 77, 305-312.
Santos A, Fidalgo F, Santos I, Salema R (2002) In vitro bulb formation of Narcissus asturiensis, a threatened species of the Amaryllidaceae. J Hortic Sci Biotech 77, 149-152.
Seabrook JEA, Cumming BG (1977) The In vitro Propagation of Amaryllis (Hippeastrum spp. Hybrids). In Vitro 13, 831-836.
Sharifi A, Moshtaghi N, Bagheri AR (2010) Applied Plant Tissue Culture. First Edition, Jahad-e-daneshgahi publication, Mashhad (in Persian).
Smith RH, Burrow J, Kurten K (1999) Challenges associated with micropropagation of Zephyranthes and Hippestarum sp. (Amaryllidaceae). In Vitro Cell Dev- Pl 35, 281-282.
Witomska M, Lukaszewska A, Wojtowicz M (2008) Micropropagation of Hippeastrum × chmielii chm. From scale and scape explants. Propag Ornam Plants 8, 158-160.
Ye L, Shi YM (2008) Research on pollen germination and pollen preservation characteristic of Hippeastrum. J Shanghai Jiaotong Univ (Sci), 26:9-12.
Zakizadeh S, Kaviani B, Onsinejad R (2013) In vitro rooting of amaryllis (Hippeastrum johnsonii), a bulbous plant, via NAA and 2iP. Ann Biol Res 4, 69-71. | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 879 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 438 |